虽然高通量测序分析最常用的操作是将fastq比对到参考基因组得到BAM文件,但偶尔我们也需要提取BAM文件中特定区域中fastq。最开始我认为这是一个非常简单的操作,因为samtools其实已经提供了相应的工具samtools fastq
.
以biostar handbook的Ebola病毒数据为例,首先获取比对得到的BAM文件。
1 | # 建立文件夹 |
让我们尝试提取下前1kb比对的fastq文件
1 | samtools view -h SRR1553500.bam KJ660346.1:1-1000 | samtools fastq -1 read_1.fq -2 read_2.fq - |
看起来似乎我们成功了,那让我们把这些序列比对回去吧
1 | bwa mem refs/AF086833.fa read_1.fq read_2.fq |
你会发现这里产生了错误。这个错误说的是配对的read名字不同。导致问题的原因是:samtools fastq会按照fastq在bam里原本的顺序进行提取,而按照位置排序的bam的两个配对read并不是前后紧挨着的。所以我们需要进行一波排序。
1 | cat read_1.fq \ |
这里将5个shell命令用管道连起来完成这个任务,咋看起来比较复杂,但是理解每一步的目的,每个参数的作用,以后就能活用起来了。
首先用cat逐行读取read,传入到paste中。paste的作用是将多个文件合并成一个文件,做法比较简单粗暴,举个例子
1 | cat A.txt |
cat read_1.fq | paste - - - -
表示读取4行合并成一行。相当于fastq里的read都会用一行而不是四行表示。接着用sort
按照第一行(-k1,1)排序,内存的缓冲数据为3G(-S 3G). 然后将制表符替换成换行符,让一行又变回到4行,后续是压缩成gz,降低磁盘占用。
这样做其实还没又解决问题,因为这两个文件里的reads数其实不相同,我们需要进一步从里面剔除掉只有一方才有的read。这里使用的seqkit
,一个非常强大的序列处理轮子。
1 | seqkit grep -f <(seqkit seq -n -i read_1.fq.gz ) read_2.fq.gz > read_flt_2.fq |
终于,你得到了配对存放的两个fastq文件。
通过这个案例我想表达的观点是:虽然有些时候没有现成的工具可以解决你的问题,但是你可以通过组合几个现有的工具来完成。也就是将一个大问题拆解成几个独立的小问题,然后逐个击破。
当然,你首先得熟悉一些已有的工具,比如说常用unix命令:sort, paste, tr等,和一些非常强大生信命令行工具:samtools, bedtools, seqkit等。
一个更佳方便的方法
前面只是问题的一种方法,可能还不是最好的,但是我当初最先想到的一个比较粗暴的方法。当然更佳巧妙的方法是,提取序列之后可以按照read name排序,然后提取
1 | samtools view -h SRR1553500.bam KJ660346.1:1-1000 | samtools sort -n | samtools fastq -1 read_1.fq -2 read_2.fq -s singleton.fq - |
是不是更好理解了。